МЕТОД ВИМІРЮВАННЯ ПРОНИКНОСТІ ЕПІТЕЛІЮ ТОВСТОЇ КИШКИ ЩУРІВ У РІЗНІ ТЕРМІНИ ЕКСПЕРИМЕНТАЛЬНОГО КОЛІТУ

Автор(и)

  • A. I. Afitska Навчально-науковий центр «Інститут біології» Київський національний університет імені Тараса Шевченка, Ukraine
  • T. V. Dovbynchuk Навчально-науковий центр «Інститут біології» Київський національний університет імені Тараса Шевченка, Ukraine
  • Y. V. Holota Навчально-науковий центр «Інститут біології» Київський національний університет імені Тараса Шевченка, Ukraine
  • T. M. Chervinska Навчально-науковий центр «Інститут біології» Київський національний університет імені Тараса Шевченка, Ukraine
  • G. M. Tolstanova Навчально-науковий центр «Інститут біології» Київський національний університет імені Тараса Шевченка, Ukraine

DOI:

https://doi.org/10.24061/1727-4338.XIV.4.54.2015.3

Ключові слова:

проникність епітелію, виразковий коліт, товста кишка, методи дослідження епітеліального бар’єру

Анотація

Було проведено аналіз існуючих методів дослідження бар’єрної функції епітелію товстої кишки при запальних захворюваннях кишечнику та адаптовано метод визначення проникності епітелію товстої кишки для щурів лінії Wistar за проникненням фарби Еванс синій із кишечнику в кров. Зроблено висновки про більшу чутливість щурів лінії Wistar, порівняно з щурами лінії Sprague-Dawley, до токсичних впливів великих кількостей фарб. Встановлено, що при пероральному введенні рух фарби ЕВ вздовж травного каналу більш повільний у щурів з експериментальним колітом, порівняно з контрольними щурами, тому цей метод є ненадійним для дослідження змін епітеліальної проникності кишечнику.

Використання 3% концентрації фарби Еванса при пероральному та введенні в ізольовану ділянку кишки, призводить до летальних наслідків в експериментах на щурах лінії Wistar та не може бути рекомендованим до використання.

Оптимальними умовами проведення досліджень змін епітеліальної проникності товстої кишки на щурах лінії Wistar є введення в ізольовану ділянку товстої кишки 1,5% фарби ЕВ та визначення її концентрації в зразках плазми крові через 15, 30, 45 та 60 хвилин.

Посилання

Hayakawa K, Mimura Y, Tachibana S, et al. A Study for collecting background data on Wistar Hannover rats in general toxicity studies - comparative data to Sprague Dawley rats. J. Toxicol. Sci. 2013;38(6):855-73.

Hueper WC, Ichniowski CT. Experimental Studies in Cardiovascular Pathology. VIII. Late Vascular Reactions of Histamine Shock in Dogs. Arch. Surg. 1944;17:44.

Lange S, Delbro DS, Jennische E. Evans Blue Permeation of Intestinal Mucosa in the Rats. Scand J Gastroenterol. 1994;29:38-46.

Larauche M, Gourcerol G, Wang L, et al. Cotragine, a CRF1 agonist, indyces stresslike alterations of colonic function and visceral hypersensitivity in rodents primarily through peripheral pathways. Am. J. Physiol. Gastrointest. Liver Physiol. 2009;297:215-27.

Markus G, Baumberger J. A polarographic study of Evans blue and its combination with plasma proteins. J. Biol. Chem. 1954;206:59-65.

Nylander O, Sahabi M, Bark J. Characterization of 51-Cr-EDTA as a marker of duodenal mucosal permeability. Acta Physiol Scand. 1991;143:117-26.

Ohama T, Hori M, Ozaki H. Mechanism of abnormal intestinal motility in inflammatory bowel disease: how smooth muscle contraction is reduced? J. Smooth Muscle Res. 2007;43(2):43-54.

O’Malley D, Dinan TG, Cryan JF. Interleukin-6 modulates colonic transepithelial ion transport in the stress-sensitive Wistar Kyoto rat. Frontiers in Pharmacology|Gastrointestinal Pharmacology. 2012;3(Article 190):1-7.

Pastorelli L, DeSalvo C, Mercado JR, Vecchi M, Pizarro TT. Central role of the gut epithelial barrier in the pathogenesis of chronic intestinal inflammation: lessons learned from animal models and human genetics. Frontiers in Immunology. 2013;4:1-22.

Przystaś W, Zabłocka- E. Godlewska, Grabińska-Sota Е. Biological Removal of Azo and Triphenylmethane Dyes and Toxicity of Process By-Products. Water Air Soil Pollut. 2012;223:1581–92.

Roberts LN. Evans Blue Toxicity. Canad. M.A.J. 1954;71:489–91.

Satoh H, Sato F, Takami K, Szabo S. New Ulcerative Colitis Model Induced by Sulfhydryl Blockers in Rats and the Effects of Antiinflammatory Drugs on the Colitis. Jpn. J. Pharmacol. 1997;73:299-309.

Tolstanova G, Deng X, S. French W, et al. Early endothelial damage and increased colonic vascular permeability in the development of experimental ulcerative colitis in rats and mice. Laboratory Investigation. 2012;92:9-21.

Turgeon N, Blais M, Gagnе J.-M. HDAC1 and HDAC2 Restrain the Intestinal Inflammatory Response by Regulating Intestinal Epithelial Cell Differentiation. PLOS ONE. 2013;8(9):1–17.

##submission.downloads##

Опубліковано

2017-04-07

Номер

Розділ

Статті