ВПЛИВ ВВЕДЕННЯ КВЕРЦЕТИНУ НА ЧОЛОВІЧУ РЕПРОДУКТИВНУ ФУНКЦІЮ ЗА УМОВ ЕКСПЕРИМЕНТАЛЬНОЇ ХРОНІЧНОЇ ХВОРОБИ НИРОК
DOI:
https://doi.org/10.24061/1727-4338.XXI.2.80.2022.05Ключові слова:
кверцетин, сперматогенез, сперматозоїд, хронічна хвороба нирокАнотація
Мета роботи – оцінити ефект п’ятикратного введення кварцетину
на репродуктивну функцію самців-мишей за умов експериментальної хронічної
хвороби нирок (ЕХХН).
Матеріали та методи. Дослідження виконано двома серіями експериментів
на самцях і самицях мишей з ЕХХН, модель якої створена шляхом імунізації тварин
гомогенатом нирки.
Кверцетин (КВР, Quercetin, Sigma, USA, 50 мг/кг) вводили внутрішньоочеревинно
один раз на день, п’ять разів, починаючи відразу після четвертої імунізації
(останньої, через 3 тижні від початку досліду).
Перша серія експериментів присвячена вивченню впливу КВР на кількість
сперматозоїдів (млн./мл) і кількість їх аномальних форм.
Фертильні якості самців після застосування КВР оцінено в другій серії
експериментів, після підсадки їх до інтактних самиць. Досліджено: преі постімплантаційну ембріональну смертність та кількість живих плодів, що
припадають на одну самицю.
Результати. Введення КВР тваринам без ЕХХН не викликає змін кількості
сперматозоїдів, показників пре- і постімплантаційної ембріональної смертності
і кількості живих новонароджених порівняно з такими величинами в контролі.
Введення КВР за умов експериментальної хронічної хвороби нирок призводить
до зменшення (в 1,60 раза) кількості аномальних сперматозоїдів і величини
постімплантаційної смертності ембріонів (в 1,37 раза), а також до збільшення
(в
1,47 раза) кількості новонароджених.
Висновки. Введення кверцетину за умов експериментальної хронічної хвороби
нирок призводить до зменшення кількості аномальних сперматозоїдів і величини
постімплантаційної смертностіембріонів, а також дозбільшеннякількостіживих
плодів, що припадають на одну самицю. Кверцетин може бути рекомендованим для
клінічної апробації стосовно корекції порушення сперматогенезу за умов хронічної
хвороби нирок і для уточнення нових стратегій її лікування.
Посилання
Pertuz W, Castaneda DA, Rincon O, Lozano E. Sexual dysfunction
in patients with chronic renal disease: does it improve with renal
transplantation? Transplantat Proc. 2014;46(9):3021-6. doi:
1016/j.transproceed.2014.07.017
Tvrdá E, Tušimová E, Kováčik A, Paál D, Libová Ľ, Lukáč
N. Protective effects of quercetin on selected oxidative biomarkers
in bovine spermatozoa subjected to ferrous ascorbate. Reprod.
Domest. Anim. 2016;51(4):524-37. doi: 10.1111/rda.12714
Dokumacioglu E, Iskender H, Sen TM, Ince I, Dokumacioglu
A, Kanbay Y, et al. The Effects of Hesperidin and Quercetin on
Serum Tumor Necrosis Factor- Alpha and Interleukin-6 Levels
in Streptozotocin- induced Diabetes Model. Pharmacogn Mag.
;14(54):167-73. doi: 10.4103/pm.pm_41_17
Keskin G, Gümüş AB, Yiğitoğlu GT. Sexual dysfunctions and
related variables with sexual function in patients who undergo
dialysis for chronic renal failure. J Clin Nurs. 2019;28(1-2):257-69.
doi: 10.1111/jocn.14602
Tekkarismaz N, Tunel M, Ozer C. Dialysis modality and sexual
dysfunction in male patients. Andrologia. 2020; 52(10). e13735.
https://doi: 10.1111/and.13735
Stozer A, Hojsb R, Dolenšek J. Beta Cell Functional Adaptation and
Dysfunction in Insulin Resistance and the Role of Chronic Kidney
Disease. Nephron. 2019;143(1):33-7. doi: 10.1159/000495665
Abarikwu SO, Simple G, Onuoha CS. Morphometric Evaluation
of the Seminiferous Tubules and the Antioxidant Protective Effects
of Gallic Acid and Quercetin in the Testis and Liver of Butyl
Phthalate Treated Rats. Indian J Clin Biochem. 2020;35(1):20-31.
doi: 10.1007/s12291-018-0788-0
Barbagallo F, La Vignera S, Cannarella R, Aversa A, Calogero AE,
Condorelli RA. Evaluation of sperm mitochondrial function: A key
organelle for sperm motility. J Clin Med [Internet]. 2020[cited
May 22];9(2):363. Available from: https://www.ncbi.nlm.
nih.gov/pmc/articles/PMC7073944/pdf/jcm-09-00363.pdf doi:
3390/jcm9020363
Tvrdá E, Debacker M, Ďuračka M, Kováč J, Bučko O. Quercetin
and Naringenin Provide Functional and Antioxidant Protection to
Stored Boar Semen. Animals (Basel) [Internet]. 2020[cited 2022
May 19];10(10):1930. Available from: https://www.ncbi.nlm.nih.
gov/pmc/articles/PMC7589831/pdf/animals-10-01930.pdf doi:
3390/ani10101930
Winn E, Whitaker BD. Quercetin supplementation to the thawing
and incubation media of boar sperm improves post-thaw sperm
characteristics and the in vitro production of pig embryos. Reprod
Biol. 2020;20(3):315-20. doi: 10.1016/j.repbio.2020.06.002
Ukrains’ka SI, Kaleinikova OM, Sribna VO, Stupchuk MS,
Anik- Vinohradova OO, Blashkiv TV, ta in., vynakhidnyky; Instytut
fiziolohii im. OO. Bohomol’tsia, patentovlasnyk. Sposib otsinky
vplyvu suspenzii antyhenu nyrky na cholovichu reproduktyvnu
funktsiiu u myshei [Method for evaluating effect of kidney antigen
suspension on male reproductive function in mice]. Patent Ukrainy
№ 148526. 2021 Ser 19. (in Ukrainian)
Ukraіnska SI, Kaluynikova OM, Blashkiv TV. Porushennia
spermatohenezu za umov eksperymental’noi khronichnoi
khvoroby nyrok [Disorder of spermatogenesis under conditions of
experimental chronic kidney disease]. Сlinical and experimental
pathology. 2021;20(3):60-7. doi: 10.24061/1727-4338.
XX.3.77.2021.9 (in Ukrainian)
Johnson MH, Everitt BJ. Essential reproduction. 4th ed. WileyBlackwell; 1995. 280 p.
Zini A, Schlegel PN. Identification and characterization of
antioxidant enzyme mRNAs in the rat epididymis. Int J Androl.
;20(2):86-91. doi: 10.1046/j.1365-2605.1997.00039.x
Ma Z, Nguyen TH, Huynh TH, Do PT, Huynh H. Reduction of
rat prostate weight by combined quercetin-finasteride treatment is associated with cell cycle deregulation. J Endocrinol.
;181(3):493-507. doi: 10.1677/joe.0.1810493
Taepongsorat L, Tangpraprutgul P, Kitana N, Malaivijitnond
S. Stimulating effects of quercetin on sperm quality and reproductive
organs in adult male rats. Asian J Androl. 2008;10(2):249-58. doi:
1111/j.1745-7262.2008.00306.x
Abarikwu SO, Pant AB, Farombi EO. Dietary antioxidant, quercetin,
protect Sertoli-germ cell co-culture from atrazine- induced
oxidative damage. J Biochem Mol Toxicol. 2012;26(11):477-85.
doi: 10.1002/jbt.21449
Oyagbemi A, Omobowale T, Saba A, Adedara I, Olowu E, Akinrinde
A, et al. Gallic acid protects against cyclophosphamide- induced
toxicity and epididymis of rats. Andrologia. 2016;48(4):393-401.
doi: 10.1111/and.12459
Jahan S, Ain QU, Ullah H. Therapeutic effects of quercetin
against bisphenol A induced testicular damage in male Sprague
Dawley rats. Syst Biol Reprod Med. 2016;62(2):114-24. doi:
3109/19396368.2015.1115139
Silva ECB, Arruda LCP, Silva SV, Souza HM, Guerra MMP.
High resveratrol or quercetin concentrations reduce the
oscillation index of frozen goat semen. Arq Bras Med Vet Zootec.
;68(5):1237-43. doi: 10.1590/1678-4162-8670
Aravindakshan M, Chauhan PS, Sundaram K. Studies on germinal
effects of quercetin, a naturally occurring flavonoid. Mutat Res.
;144(2):99-106. doi: 10.1016/0165-7992(85)90010-7
##submission.downloads##
Опубліковано
Номер
Розділ
Ліцензія
Авторське право (c) 2022 C.I. Українська, О.М. Калейнікова, Т. Ю. Вознесенська, Т. В. Блашків
Ця робота ліцензується відповідно до Creative Commons Attribution-NonCommercial-ShareAlike 4.0 International License.
Часопис користується «Типовим шаблоном положення про авторські права».
