ДИНАМІКА ПОКАЗНИКІВ АНТИОКСИДАНТНОЇ СИСТЕМИ КРОВІ ЩУРІВ ЗА УМОВ ОКСИДАЦІЙНОГО СТРЕСУ ТА ДІЇ ЛІПОСОМАЛЬНОГО ПРЕПАРАТУ
DOI:
https://doi.org/10.24061/1727-4338.XXII.4.86.2023.01Ключові слова:
тетрахлорметан, антиоксидантні ензими, пероксидне окиснення ліпідів, глутатіонАнотація
Наведено результати досліджень впливу введення ліпосомального препарату
«Бутаінтерсил» на динаміку окремих показників антиоксидантної системи
організму щурів при їх інтоксикації тетрахлорметаном (CCl4). Для досліджень
використовувалимодельтетрахлорметану,яка,надумкубагатьохавторів,найбільш
адекватновідтворює розвиток оксидаційного стресу. Отруєнняекспериментальних
тварин тетрахлорметаном за морфологічною картиною і біохімічними змінами є
близьким до гострих уражень печінки різної етіології у людини та тварин.
Мета дослідження – вивчити вплив ліпосомального препарату «Бутаінтерсил»
на антиоксидантний статус організму щурів за умов оксидаційного стресу.
Матеріали і методи. Моделювання оксидаційного стресу здійснювали на
статевозрілих самцях щурів Вістар масою тіла 180-200 г. У крові щурів
досліджували зміни активності глутатіонпероксидази та рівня відновленого
глутатіону, а також рівні продуктів пероксидного окиснення ліпідів: гідроперекиси
ліпідів та ТБК-активних продуктів.
Результати. Внутрішньом’язове введення50 %-го олійного розчину тетрахлорметану
у дозі 0,25 мл/100 г маси тіла тварини призвело до змін активності глутатіонової
системи антиоксидантного захисту: зниження активності глутатіонпероксидази
та рівня відновленого глутатіону. Водночас в інтоксикованих тварин спостерігали
посилення процесів пероксидного окиснення ліпідів, а саме: зростання рівня
гідроперекисів ліпідів та ТБК-активних продуктів протягом усього періоду
досліджень. При додатковому введенні тваринам ліпосомального препарату
«Бутаінтерсил» за умов інтоксикації тетрахлорметаном встановлено посилення
антиоксидантногостатусу.На14-тудобудослідуактивністьглутатіонпероксидази
та рівень відновленого глутатіону були найвищими у крові щурів другої дослідної
групи порівняно з інтоксикованими тваринами у 2,1 і 2,37 раза відповідно. Також
за умов дії досліджуваного ліпосомального препарату у крові щурів другої дослідної
групи виявлено зниження рівня гідроперекисів ліпідів та ТБК-активних продуктів.
Висновки. Отримані результати вказують про корегуючий вплив бутаінтерсилу
на параметри антиоксидантного захисту організму щурів за їх інтоксикації
тетрахлорметаном.
Посилання
Al- Rasheed NM, Al- Rasheed NM, Faddah LM, Mohamed AM,
Mohammad RA, Al- Amin M. Potential impact of silymarin in
combination with chlorogenic acid and/or melatonin in combating
cardiomyopathy induced by carbon tetrachloride. Saudi Journal
of Biological Sciences. 2014;21(3):265-74. doi: 10.1016/j.
sjbs.2013.09.006
Boll M, Weber LW, Becker E, Stampfl A. Mechanism of carbon
tetrachloride- induced hepatotoxicity. Hepatocellular damage
by reactive carbon tetrachloride metabolites. Z Naturforsch C J
Biosci. 2001;56(7-8):649-59. doi: 10.1515/znc-2001-7-826
Deniz GY, Laloglu E, Koc K, Geyikoglu F. Hepatoprotective
potential of Ferula communis extract for carbon tetrachloride induced
hepatotoxicity and oxidative damage in rats. Biotech Histochem.
;94(5):334-40. doi: 10.1080/10520295.2019.1566831
Li R, Zhang P, Li C, Yang W, Yin Y, Tao K. Tert-butylhydroquinone
mitigates Carbon Tetrachloride induced Hepatic Injury in mice. Int
J Med Sci. 2020;17(14):2095-103. doi: 10.7150/ijms.45842
Martynov MY, Zhuravleva MV, Vasyukova NS, Kuznetsova
EV, Kameneva TR. Oxidative stress in the pathogenesis of
stroke and its correction. Zh Nevrol Psikhiatr im SS Korsakova.
;123(1):16-27. doi: 10.17116/jnevro202312301116
Dang X, Cho S, Kim IH. Silybum marianum seed extract
supplementation positively affects the body weight of weaned
piglets by improving voluntary feed intake. J Anim Sci Technol.
;64(4):696-706. doi: 10.5187/jast.2022.e39
Gutyj BV, Martyshuk TV, Parchenko VV, Kaplaushenko AH,
Bushueva IV, Hariv II, et al. Effect of liposomal drug based on
interferon and extract from Silybum marianum on antioxidative
status of bulls against the background of contamination of
fodders by cadmium and plumbum. Regulatory Mechanisms in
Biosystems. 2022;13(4):419-25. doi: 10.15421/022255
Ono R, Yoshioka Y, Furukawa Y, Naruse M, Kuwagata M,
Ochiya T, et al. Novel hepatotoxicity biomarkers of extracellular
vesicle (EV)-associated miRNAs induced by CCl4. Toxicol Rep.
;7:685-92. doi: 10.1016/j.toxrep.2020.05.002
Ernst L, Zieglowski L, Schulz M, Moss M, Meyer M,
Weiskirchen R, et al. Severity assessment in mice subjected to
carbon tetrachloride. Sci Rep [Internet]. 2020[cited 2023 Dec
;10(1):15790. Available from: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/
pmc/articles/PMC7519684/pdf/41598_2020_Article_72801.pdf
doi: 10.1038/s41598-020-72801-1
Li X, Liu X, Zhang Y, Cheng C, Fan J, Zhou J, et al. Hepatoprotective
effect of apolipoprotein A4 against carbon tetrachloride induced
acute liver injury through mediating hepatic antioxidant and
inflammation response in mice. Biochem Biophys Res Commun.
;534:659-65. doi: 10.1016/j.bbrc.2020.11.024
Hamed H, Gargouri M, Bellassoued K, Ghannoudi Z, Elfeki A,
Gargouri A. Cardiopreventive effects of camel milk against carbon
tetrachloride induced oxidative stress, biochemical and histological
alterations in mice. Arch Physiol Biochem. 2018;124(3):253-60.
doi: 10.1080/13813455.2017.1395889
Pergel A, Tümkaya L, Çolakoğlu MK, Demiral G, Kalcan S, Özdemir
A, et al. Effects of infliximab against carbon tetrachloride- induced
intestinal injury via lipid peroxidation and apoptosis. Hum Exp
Toxicol. 2019;38(11):1275-82. doi: 10.1177/0960327119867758
Ustuner D, Colak E, Dincer M, Tekin N, Burukoglu Donmez D,
Akyuz F, et al. Posttreatment Effects of Olea Europaea L. Leaf Extract
on Carbon Tetrachloride- Induced Liver Injury and Oxidative Stress in
Rats. J Med Food. 2018;21(9):899-904. doi: 10.1089/jmf.2017.0143
Scholten D, Trebicka J, Liedtke C, Weiskirchen R. The carbon
tetrachloride model in mice. Lab Anim. 2015;49(1 Suppl):4-11.
doi: 10.1177/0023677215571192
Gutyj BV, Varkholiak IS, Verveha BM, Martyshuk TV, Leskiv KY.
The antioxidant protection system state of rats under experimental
doxorubicin intoxication and the effects of correcting factors.
Medical and Clinical Chemistry. 2023;1:34-41. doi: 10.11603/
mcch.2410-681X.2023.i1.13714
Martyshuk TV, Gutyj BV, Zhelavskyi MM, Midyk SV, Fedorchenko
AM, Todoriuk VB, et al. Effect of Butaselmevit- Plus on the
immune system of piglets during and after weaning. Ukrainian
Journal of Ecology. 2020;10(2):347-52. doi: 10.15421/2020_106
Varkholiak IS, Gutyj BV, Zolototska OB, Goralskyi LP, Sokulskyi
IM, Khalak VI, et al. Experimental assessment of the toxicity
of a cardiac drug based on a phosphodiesterase-3 inhibitor and
ethylmethylhydroxypyridine succinate. Scientific Messenger
of Lviv National University of Veterinary Medicine and
Biotechnologies. Series: Veterinarysciences. 2022;24(105):109-19.
doi: 10.32718/nvlvet10516
Vlizlo VV, redaktor. Laboratorni metody doslidzhen’ u biolohii,
tvarynnytstvi ta veterynarnii medytsyni [Laboratory research
methods in biology, animal husbandry and veterinary medicine].
L’viv: Spolom; 2012. 764 p. (in Ukrainian)
Gutyj BV, Petryshak RA, Mylostyvyi RV, Popadiuk SS, Petryshak
OI, Martyshuk TV, et al. The influence of the feed additive
«Sylimevit» on the antioxidant protection of the body of dogs.
Scientific Messenger of Lviv National University of Veterinary
Medicine and Biotechnologies. Series: Agriculturalsciences.
;25(98):118-124. doi: 10.32718/nvlvet-a9820
Gutyj B, Stybel V, Darmohray L, Lavryshyn Y, Turko I, Hachak
Y, et al. Prooxidant- antioxidant balance in the organism of bulls
(young cattle) after using cadmium load. Ukrainian Journal of
Ecology. 2017;7(4):589-96. doi: 10.15421/2017_165
##submission.downloads##
Опубліковано
Номер
Розділ
Ліцензія
Авторське право (c) 2024 Л.В. Вислоцька, Б.В. Гутий, Б.М. Вервега, Т.В. Мартишук, З.А. Гута
Ця робота ліцензується відповідно до Creative Commons Attribution-NonCommercial-ShareAlike 4.0 International License.
Часопис користується «Типовим шаблоном положення про авторські права».
