АНАЛІЗ ОСЕРЕДКІВ СКОСТЕНІННЯ ДІАФІЗА ЛІКТЬОВОЇ КІСТКИ У ПЛОДІВ 20-32 ТИЖНІВ ГЕСТАЦІЇ
DOI:
https://doi.org/10.24061/1727-4338.XXIII.1.87.2024.04Ключові слова:
ліктьова кістка, осередки скостеніння, комп’ютерна томографія, плідАнотація
Мета дослідження – вивчити особливості скостеніння діафізів правої і лівої
ліктьових кісток у плодів 20-32-х тижнів гестації.
Методи. Для з’ясування особливостей скостеніння ліктьових кісток у плодів
людини аналізували комп’ютерні томограми 52 плодів людини віком 20-32 тижні
гестації. Результати дослідження статистично проаналізовані у програмі Excel.
Для порівняння середніх використовували t-критерій Ст’юдента для незалежних
змінних та однофакторний дисперсійний аналіз.
Результати. У плодів у віковому діапазоні 20-32 тижні гестації середня довжина
осифікації правої ліктьової кістки збільшується з 20,72±0,33 мм до 42,27±0,14 мм,
а лівої – з 21,43±0,13 мм до 42,62±0,05 мм, y = 1,7186 х вік – 12,116 (R2 = 0,987).
Проксимальний поперечний діаметр діафіза ліктьової кістки збільшується, що
описується таким квадратичним рівнянням: y = 0,2424 x вік – 1,7107 (R² = 0,987).
Поперечний діаметр середньої частини діафіза ліктьової кістки збільшується
згідно з таким квадратичним рівнянням: y = 0,1391 x вік – 0,978 (R² = 0,987).
Поперечний діаметр дистальної частини діафіза ліктьової кістки зростає та
описується квадратичним рівнянням: y = 0,1404 x вік – 0,9946 (R² = 0,987).
Висновок. Отримані морфометричні дані про осередки скостеніння діафіза
правої і лівої ліктьових кісток можна вважати нормативними для відповідних
тижнів гестації; вони можуть слугувати для оцінки віку плода і ультразвукової
діагностики уроджених вад розвитку.
Посилання
Kasraeian M, Shahraki HR, Asadi N, Vafaei H, Sameni S. Crosssectional study of fetal long-bone length in an Iranian population at
-25 weeks of gestation. Int J Gynaecol Obstet. 2017;137(1):20-5.
doi: 10.1002/ijgo.12099
Bartosch C, Vilar I, Rodrigues M, Costa L, Botelho N, Brandão O.
Fetal autopsy parameters standards: biometry, organ weights,
and long bone lengths. Virchows Arch. 2019;475(4):499-511.
doi: 10.1007/s00428-019-02639-0
Krakow D. Skeletal dysplasias. Clin Perinatol. 2015;42(2):301-19.
doi: 10.1016/j.clp.2015.03.003
Jurcă MC, Jurcă SI, Mirodot F, Bercea B, Severin EM, Bembea M,
et al. Changes in skeletal dysplasia nosology. Rom J Morphol
Embryol. 2021;62(3):689-96. doi: 10.47162/rjme.62.3.05
Liu W, Cao J, Shi X, Li Y, Qiao F, Wu Y. Genetic testing and
diagnostic strategies of fetal skeletal dysplasia: a preliminary study
in Wuhan, China. Orphanet J Rare Dis [Internet]. 2023[cited 2024
Mar 28];18(1):336. Available from: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/
pmc/articles/PMC10599061/pdf/13023_2023_Article_2955.pdf
doi: 10.1186/s13023-023-02955-4
Bober MB, Taylor M, Heinle R, Mackenzie W. Achondroplasiahypochondroplasia complex and abnormal pulmonary anatomy. Am
J Med Genet A. 2012;158A(9):2336-41. doi: 10.1002/ajmg.a.35530
Costantini A, Muurinen MH, Mäkitie O. New gene discoveries
in skeletal diseases with short stature. Endocr Connect [Internet].
[cited 2024 Mar 25];10(5): R160-74. Available from:
https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC8183621/pdf/
EC-21-0083.pdf doi: 10.1530/ec-21-0083
Zhou X, Chandler N, Deng L, Zhou J, Yuan M, Sun L. Prenatal
diagnosis of skeletal dysplasias using a targeted skeletal gene
panel. Prenat Diagn. 2018;38(9):692-9. doi: 10.1002/pd.5298
Geister KA, Camper SA. Advances in Skeletal Dysplasia Genetics.
Annu Rev Genomics Hum Genet. 2015;16:199-227. doi: 10.1146/
annurev-genom-090314-045904
Kumar M, Thakur S, Haldar A, Anand R. Approach to the
diagnosis of skeletal dysplasias: Experience at a center with limited
resources. J Clin Ultrasound. 2016;44(9):529-39. doi: 10.1002/
jcu.22371
Toru HS, Nur BG, Sanhal CY, Mihci E, Mendilcioğlu İ, Yilmaz E,
et al. Perinatal Diagnostic Approach to Fetal Skeletal Dysplasias:
Six Years Experience of a Tertiary Center. Fetal Pediatr Pathol.
;34(5):287-306. doi: 10.3109/15513815.2015.1068414
Calder AD, Offiah AC. Foetal radiography for suspected skeletal
dysplasia: technique, normal appearances, diagnostic approach.
Pediatr Radiol. 2015;45(4):536-48. doi: 10.1007/s00247-014-3130-x
Wiśniewski M, Baumgart M, Grzonkowska M, Szpinda M,
Pawlak- Osińska K. Quantitative anatomy of the ulna’s shaft
primary ossification center in the human fetus. Surg Radiol Anat.
;41(4):431-9. doi: 10.1007/s00276-018-2121-2
Bonafe L, Cormier- Daire V, Hall C, Lachman R, Mortier G,
Mundlos S, et al. Nosology and classification of genetic
skeletal disorders: 2015 revision. Am J Med Genet A.
;167A(12):2869-92. doi: 10.1002/ajmg.a.37365
Cho SY, Jin DK. Guidelines for genetic skeletal dysplasias for
pediatricians. Ann Pediatr Endocrinol Metab. 2015;20(4):187-91.
doi: 10.6065/apem.2015.20.4.187
Lee S, Kim T, Lee H, Park J, Chung S, Jeon D. Length Measurement
of Fetal Long Bone and Fetal Anomaly Detection. Webmed
Central Obstetrics and Gynaecology [Internet]. 2013[cited
Mar 25];4(5): WMC004236. Available from: https://www.
webmedcentral.com/article_view/4236 doi: 10.9754/journal.
wmc.2013.004236
Baumgart M, Wiśniewski M, Grzonkowska M, Badura M,
Szpinda M, Pawlak- Osińska K. Three-dimensional growth of tibial
shaft ossification in the human fetus: a digital- image and statistical
analysis. Surg Radiol Anat. 2019;41(1):87-95. doi: 10.1007/
s00276-018-2138-6
Dmytrenko RR, Koval OA, Andrushchak LA, Makarchuk IS,
Tsyhykalo OV. Peculiarities of the identification of different types of
tissues during 3d-reconstruction of human microscopic structures.
Neonatology, surgery and perinatal medicine. 2023;13(4):125-34.
doi: 10.24061/2413-4260.XIII.4.50.2023.18
Baumgart M, Wiśniewski M, Grzonkowska M, Badura M,
Dombek M, Małkowski B, et al. Morphometric study of the two
fused primary ossification centers of the clavicle in the human
fetus. Surg Radiol Anat. 2016;38(8):937-45. doi: 10.1007/
s00276-016-1640-y
Pykaliuk VS, Osmanov AIu. Filo-, ontohenez orhaniv i system
liudyny [Phylo-, ontogenesis of human organs and systems].
Simferopol’; 2011. 312 p. (in Ukrainian).
Fik VB, Tsytovs’kyi MN, Kryvko YuIa, Kordys B, MateshukVatseba L, Fit’kalo O. Anatomiia skeleta liudyny: za materialamy
L’vivs’koho anatomichnoho muzeiu [Anatomy of the human
skeleton: based on the materials of the Lviv Anatomical Museum].
L’viv; 2016. 293 p. (in Ukrainian).
Exacoustos C, Rosati P, Rizzo G, Arduini D. Ultrasound
measurements of fetal limb bones. Ultrasound Obstet Gynecol.
;1(5):325-30. doi: 10.1046/j.1469-0705.1991.01050325.x
Ohuma EO, Villar J, Feng Y, Xiao L, Salomon L, Barros FC, et al.
Fetal growth velocity standards from the Fetal Growth Longitudinal
Study of the INTERGROWTH-21st Project. Am J Obstet Gynecol.
;224(2):208. doi: 10.1016/j.ajog.2020.07.054
Zorzoli A, Kustermann A, Caravelli E, Corso FE, Fogliani R, Aimi
G, et al. Measurements of fetal limb bones in early pregnancy.
Ultrasound Obstet Gynecol. 1994;4(1):29-33. doi: 10.1046/j.1469-
1994.04010029.x
Bareggi R, Grill V, Zweyer M, Sandrucci MA, Narducci P,
Forabosco A. The growth of long bones in human embryological
and fetal upper limbs and its relationship to other developmental
patterns. Anat Embryol (Berl). 1994;189(1):19-24. doi: 10.1007/
bf00193126
Jana M, Nair N, Gupta AK, Kabra M, Gupta N. Pelvic radiograph
in skeletal dysplasias: An approach. Indian J Radiol Imaging.
;27(2):187-99. doi: 10.4103/ijri.ijri_367_16
Baumgart M, Wiśniewski M, Grzonkowska M, Badura M,
DombekM, Małkowski B, et al. Morphometric study of the two fused
primary ossification centers of the clavicle in the human fetus. Surg
Radiol Anat. 2016;38(8):937-45. doi: 10.1007/s00276-016-1640-y
Cassart M, Massez A, Cos T, Tecco L, Thomas D, Van RegemorterN,
et al. Contribution of three- dimensional computed tomography
in the assessment of fetal skeletal dysplasia. Ultrasound Obstet
Gynecol. 2007;29(5):537-43. doi: 10.1002/uog.4001
McCollough CH, Schueler BA, Atwell TD, Braun NN,
Regner DM, Brown DL, et al. Radiation exposure and pregnancy:
when should we be concerned? Radiographics. 2007;27(4):909-18.
doi: 10.1148/rg.274065149
Wiśniewski M, Baumgart M, Grzonkowska M, Małkowski B,
Wilińska- Jankowska A, Siedlecki Z, et al. Ossification center of
the humeral shaft in the human fetus: a CT, digital, and statistical
study. Surg Radiol Anat. 2017;39(10):1107-16. doi: 10.1007/
s00276-017-1849-4
Liu Y, Wang L, Yang YK, Liang Y, Zhang TJ, Liang N, et al. Prenatal
diagnosis of fetal skeletal dysplasia using targeted next-generation
sequencing: an analysis of 30 cases. Diagn Pathol [Internet].
[cited 2024 Mar 28];14(1):76. Available from: https://www.
ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC6626426/pdf/13000_2019_
Article_853.pdf doi: 10.1186/s13000-019-0853-x
Macé G, Sonigo P, Cormier- Daire V, Aubry MC, Martinovic J,
Elie C, et al. Three-dimensional helical computed tomography in
prenatal diagnosis of fetal skeletal dysplasia. Ultrasound Obstet
Gynecol. 2013;42(2):161-8. doi: 10.1002/uog.12298
##submission.downloads##
Опубліковано
Номер
Розділ
Ліцензія
Авторське право (c) 2024 А.О. Коваль
Ця робота ліцензується відповідно до Creative Commons Attribution-NonCommercial-ShareAlike 4.0 International License.
Часопис користується «Типовим шаблоном положення про авторські права».
