ВПЛИВ S-АДЕМЕТІОНІНУ НА ПАТОГЕНЕТИЧНІ МЕХАНІЗМИ РОЗВИТКУ ДОКСОРУБІЦИН-ІНДУКОВАНОГО УРАЖЕННЯ ПЕЧІНКИ НА ФОНІ НЕАЛКОГОЛЬНОГО СТЕАТОГЕПАТИТУ У ЩУРІВ

Автор(и)

  • G. S. Maslova
  • I. M. Skrypnyk

DOI:

https://doi.org/10.24061/1727-4338.XIX.2.72.2020.2

Ключові слова:

доксорубіцин, аргінін/цитруліновий цикл, ТБК-реактанти, каталаза, S-адеметіонін.

Анотація

Мета роботи – дослідити вплив S-адеметіоніну на зміни прооксидантноантиоксидантного статусу та аргінін/цитрулінового циклу на фоні доксорубіциніндукованого ураження печінки у щурів із неалкогольним стеатогепатитом. Матеріали і методи. Дослідження проведені на 30 білих нелінійних статевозрілих щурах, із них 15 (50%) самців, 15 (50%) – самок, масою 160-220 г. Щурів розподіляли на 3 групи: І (n=10) – щури (5 самців і 5 самок), яким із 1-го по 63-й день моделювали неалкогольний стеатогепатит (НАСГ), потім упродовж 3-х днів (з 64-го по 66-й) внутрішньочеревно вводили доксорубіцин із розрахунку 5 мг/кг/добу із досягненням кумулятивної дози 15 мг/кг і 0,9% розчин натрію хлориду внутрішньочеревно 1 мл; ІІ (n=10) – щури (5 самців і 5 самок), яким моделювали НАСГ і вводили доксорубіцин аналогічно І групі і S-адеметіонін (SАМе)внутрішньочеревно 100 мг/кг/добу із сумарною дозою 300 мг/кг; ІІІ (n=10) – щури (5 самців і 5 самок), які склали групу контролю. У гомогенаті печінки визначали вміст ТБК-реактантів, аргініну, цитруліну, активність каталази, аргінази, орнітиндекарбоксилази (ОДК). Результати. На фоні введення доксорубіцину у щурів із НАСГ спостерігалося зростання вмісту ТБК-реактантів при одночасному зниженні активності каталази, що супроводжувалося зменшенням активності аргінази і ОДК порівняно з контролем (р<0,05). Введення SАМе дало змогу зменшити прояви оксидативного стресу, потенційованого доксорубіцином, а також запобігти порушенню детоксикаційної і білковосинтезувальної функції печінки. Висновки. У щурів із НАСГ введення SАМе зменшує прояви оксидативного стресу, потенційованого доксорубіцином, та запобігає порушенням детоксикаційної і білковосинтезувальної функцій печінки, що виникають під впливом цього препарату.

Посилання

Granik VG. Metabolizm L-arginina (obzor) [L-Arginine Metabolism (Overview)]. Khimiko-farmatsevticheskiy zhurnal. 2003;37(3):3-20. doi: https://doi.org/10.30906/0023-1134-2003- 37-3-3-20

Korolyuk MA, Ivanova LI, Mayorova IG, Tokarev VE. Metod opredeleniya aktivnosti katalazy [Method for determination of catalase activity]. Laboratornoe delo. 1988;1:16-9. (in Russian)

Orekhovich VN, redaktor. Sovremennye metody v biokhimii. Moscow: Meditsina; 1977. Stal'naya ID, Garishvili TG. Metod opredeleniya malonovogo dial'degida s pomoshch'yu tiobarbiturovoy kisloty [Method for determination of malondialdehyde using thiobarbituric acid]; р. 66-8. (in Russian)

Styuart Dzh, Yang Dzh. Tverdofaznyy sintez peptidov [Solid Phase Peptide Synthesis]. Moscow: Mir; 1971, p. 129-30. (in Russian)

Khramov VA, Listopad GG. Modifikatsiya metoda opredeleniya ornitina po CHINARD i ee ispol'zovanie dlya kolichestvennogo opredeleniya syvorotochnoy arginazy [Modification of the method of determination of ornithine by CHINARD'S method and its use for quantitative determination of serum arginase]. Laboratornoe delo. 1973;10:591-2. (in Russian)

Khramov VA. Prostoy metod opredeleniya aktivnosti ornitindekarboksilazy v smeshannoy slyune cheloveka [A simple method for determining the activity of ornithine decarboxylase in mixed human saliva]. Klinicheskaya laboratornaya diagnostika. 1997;4:14-5. (in Russian)

Boyde TR, Rahmatullah M. Optimization of Conditions for the Colorimetric Determination of Citrulline, Using Diacetyl Monoxime. Anal Biochem. 1980;107(2):424-31. doi: 10.1016/0003-2697(80)90404-2

Afsar T, Razak S, Almajwal A. Effect of Acacia hydaspica R. Parker extract on lipid peroxidation, antioxidant status, liver function test and histopathology in doxorubicin treated rats. Lipids Health Dis [Internet]. 2019[cited 2020 Jun 20];18:126. Available from: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/ PMC6542101/pdf/12944_2019_Article_1051.pdf doi: 10.1186/ s12944-019-1051-2

Anstee QM, Day CP. S-adenosylmethionine (SAMe) therapy in liver disease: A review of current evidence and clinical utility. J Hepatol. 2012;57(5):1097-109. doi: 10.1016/j.jhep.2012.04.041

Bilgic S, Ozgocmen M. The Protective Effect of Misoprostol Against Doxorubicin Induced Liver Injury. Biotech Histochem. 2019;94(8):583-91. doi: 10.1080/10520295.2019.1605457

Caldwell RW, Rodriguez PC, Toque HA, Narayanan SP, Caldwell RB. Arginase: A multifaceted enzyme important in health and disease. Physiol Rev. 2018;98(2):641-65. doi: 10.1152/ physrev.00037.2016

Cecen E, Dost T, Culhaci N, Karul A, Ergur B, Birincioglu M. Protective Effects of Silymarin against Doxorubicin-induced Toxicity. Asian Pac J Cancer Prev. 2011;12(10):2697-704.

Frau M, Feo F, Pascale RM. Pleiotropic Effects of Methionine Adenosyltransferases Deregulation as Determinants of Liver Cancer Progression and Prognosis. J Hepatol. 2013;59(4):830-41. doi: 10.1016/j.jhep.2013.04.031

Ibrahim HG, Attia N, Hashem FEA, El Heneidy MAR. Cerium Oxide Nanoparticles: In Pursuit of Liver Protection Against Doxorubicin-Induced Injury in Rats. Biomed Pharmacotherrapy. 2018;103:773-81. doi: 10.1016/j.biopha.2018.04.075

Kocahan S, Dogan Z, Erdemli E, Taskin E. Protective effect of quercetin against oxidative stress-induced toxicity associated with doxorubicin and cyclophosphamide in rat kidney and liver tissue. Iran J Kidney Dis. 2017;11(2):124-31.

Kuzu M, Yildirim S, Kandemir FM, Küçükler S, Çağlayan C, Türk E, et al. Protective effect of morin on doxorubicin-induced hepatorenal toxicity in rats. Chem Biol Interact. 2019;308:89- 100. doi: 10.1016/j.cbi.2019.05.017

Lam SK, U KP, Li YY, Xu S, Cheng PNM, Ho JCM. Inhibition of ornithine decarboxylase 1 facilitates pegylated arginase treatment in lung adenocarcinoma xenograft models. Oncol Rep. 2018;40(4):1994-2004. doi: 10.3892/or.2018.6598

Lu SC, Mato JM. S-adenosylmethionine in Liver Health, Injury, and Cancer. Physiol Rev. 2012;92(4):1515-42. doi: 10.1152/ physrev.00047.2011

Maldonado LY, Arsene D, Mato JM, Lu SC. Methionine Adenosyltransferases in Cancers: Mechanisms of Dysregulation and Implications for Therapy. Exp Biol Med (Maywood). 2018;243(2):107-17. doi: 10.1177/1535370217740860

Mansouri E, Jangaran A, Ashtari A. Protective effects of pravastatin on doxorubicin-induced hepatotoxicity. Bratisl Lek Listy. 2017;118(5):273-7. doi: 10.4149/BLL_2017_054

Murray B, Barbier-Torres L, Fan W, Mato JM, Lu SC. Methionine adenosyltransferases in liver cancers. World J Gastroenterol. 2019;25(31):4300-19. doi: 10.3748/wjg.v25.i31.4300

Nagai K, Fukuno S, Oda A, Konishi H. Protective effects of taurine on doxorubicin-induced acute hepatotoxicity through suppression of oxidative stress and apoptotic responses. Anticancer Drugs. 2016;27(1):17-23. doi: 10.1097/CAD.0000000000000299

Shaikh F, Dupuis LL, Alexander S, Gupta A, Mertens L, Nathan PC. Cardioprotection and second malignant neoplasms associated with dexrazoxane in children receiving anthracycline chemotherapy: a systematic review and metaanalysis. J Natl Cancer Inst [Internet]. 2015[cited 2020 Jun 20];108(4):djv357. Available from: https://academic.oup.com/jnci/article/108/4/ djv357/2412399 doi: 10.1093/jnci/djv357

Valera-López A, Battino M, Navarro-Hortal MD, Giampieri F, Forbes-Hernández TY, Romero-Márquez JM, et al. An update on the mechanisms related to cell death and toxicity of doxorubicin and the protective role of nutrients. Food Chem Toxicol [Internet]. 2019[cited 2020 Jun 20];134:110834. Available from: https://www.sciencedirect.com/science/ article/pii/S0278691519306246?via%3Dihub doi: 10.1016/j. fct.2019.110834

##submission.downloads##

Опубліковано

2020-09-07

Номер

Розділ

Статті